Bioprozesse & Bioanalytik

Stammzell- und Kryotechnologie &  Bioprozesse und Bioanalytik

Mobile epidemiologische Labore inklusive BSL2-Bereich zur standortflexiblen Durchführung medizinischer Untersuchungen und anthropometrischer Messungen, Entnahme von Humanproben, Probencharakterisierung, Probenverarbeitung, klinisch-chemischer Analytik und LIN-basierter Kryokonservierung

Labore der Sicherheitsklasse S2 und S3 mit Schleusenbereich für mikrobiologische, molekularbiologische, zellbiologische und virologische Arbeiten

• Zellkulturroboter (z. B. Tecan Freedom, TAP)
• verschiedene Durchlicht- und Auflichtmikroskope mit Phasen- und Differenzialinterferenzkontrast, Fluoreszenz-, Manipulations- und Dokumentationseinheit und Inkubationskammer (z. B. Nikon, EVOS)
• Durchlicht- und Fluoreszenzmikroskop mit z-Achsen-verstellbaren Probentisch zur 3D-Darstellung biologischer Proben (Zeiss AxioObserver Z1)
• Konfokalmikroskop ausgestattet mit Weißlichtlaser und Dauerstrichlaser der Wellenlänge 405 nm (Leica-TCS-SP8-X)
• Live-Cell-Imaging Einheiten (z. B. Nikon BioStation-IM)
• HPLC-Anlage (Agilent 1260 Infinity Series)
• Massenspektrometer (Q Exactive FOCUS)
• asymmetrische Feld-Fluss-Fraktionierungsanlage mit DLS- und MALS-Detektor
• Durchflusszytometer inklusive Sortiereinheit (z. B. FACSAria, FACSCanto BD)
• Spektralphotometer für Absorptions-, Fluoreszenz- und Lumineszenz-Messungen in Mikrotiterplatten
• TER-Impedanz-Messsysteme (cellZscope®, Ussing-Kammer®) für Transportstudien und Barrierefunktionsanalysen von Flüssigkeits-Flüssigkeits-Grenzschichten
• Franz Zell-System® (Luft-Flüssigkeits-Grenzschichten-Modell, z. B. Hautbarriere)
• Aerosol-Expositions-System VITROCELL® Cloud (Luft-Flüssigkeits-Grenzschichten-Modell, z. B. Lungenbarriere)
• Bioprinter für Tissue Engineering (Rokit invivo) und µContact-Printing (GeSiM µCP)
• verschiedene Pipettierroboter (GeSim Nanoplotter, Integra ViaFlo)
• ZetaSizer ® Nano
• Gelelektrophorese-Einheiten für DNA, RNA und Proteine mit Dokumentationseinheiten (z. B. Bioanalyzer, Agilent)
• Western Blot-Einheit (BioRad)
• real time-PCR System (QuantStudio 7, Applied Biosystems) und NanoDrop 2000 (Peqlab)
• Gefriermikrotom

Labor für die Automatisierung von Stammzellprozessen und Materialcharakterisierung (Würzburg)

• Suspensionsbioreaktoren (OLS, CERO)
• Multielektroden-Array- und Impedanz-Messsystem für elektro-physiologische Untersuchungen (Axion Biosystems, Maestro Pro)
• automatisierte Zellzählgeräte (Chemometec, Nucleocounter)
• Osmometer (Gonotec, Osmomat 3000)
• Refraktometer (Kern Optics, Abbe)
• Spektralphotometer (Thermo ScientificTM NanodropTM One) zur Bestimmung der DNA-Konzentration
• Rheometer für Viskositätsmessungen (Anton Paar, MCR102)
• Nano-Indenter zur Untersuchung von mechanischen Materialeigenschaften (Optics11 Life, Pavone)
• Plasma-Pen zur Oberflächenmodizifierung (neoplas GmbH, kINPen)
• 3D Drucker (ROKIT, 3D Bioprinter INVIVO)

Optiklabor für den Betrieb und die Entwicklung optischer Messtechnik

• Ultrakurzgepulste Ti:Saphir-Laser, verschiedene weitere gepulste und cw-Laserquellen
• konfokale Ramanmikroskopie, Raman-Mikrospekrometrie
• Multiphotonen-Laser-Scanning-Mikroskop (Miltenyi TrimScope Matrix)
• UV/Vis/NIR-Spektrometer (Perkin Elmer Lambda 950)
• Fluoreszenzspektrometer (Hitachi FL4500)
• Dynamische Differenzkalorimetrie (Perkin Elmer DSC8500), betreibbar von -180°C bis 600°C

Kryolabor zur Konservierung biologischer Proben in konventionellen und vitrifikationsbasierten Verfahren

• Askion C-line automatisierte Biobank und manuelle Stickstoff-basierte Lagertanks
• Tieftemperaturwerkbänke für Arbeiten unterhalb 80°C (Askion)
• kontrollierte Einfriergeräte (z. B. SyLab, ViaFreeze Asysmtote)
• Temperiergeräte zum kontrollierten Auftauen (z. B. Thawstar BioCision)
• Gefriertrockner (Martin Christ)p
• programmierbare Tieftemperaturkammern für die Mikroskopie (Cryostage Linkam)

Mikrosystemtechnik

• Beschichtung/Mikrostrukturierung
  • Fotolithographie
  • Trockenätzanlage (RIE) und nasschemisches Ätzen
  • Beschichten
  •     Sputtern (Metalle, piezoelektrische Schichten)
  •     PECVD: Siliziumdioxid, Siliziumnitrid
  •     Abscheiden von Parylene C
  • Imidisieren von Polyimid
• Wafersäge
• 3D-Drucker
• Silikonabformen
• Aufbau- und Verbindungstechnik (Kleben, Verkapseln, Drahtbonden)
• Drucktechnologien
  •     Siebdruck (Dickschichtpasten auf Keramik, Graphen-basierte Tinte auf Polymerfolien)
  •     Rolle-zu-Rolle-Druck auf Polymerfolien (Graphen-basierte Tinte, Proteintinten)
  •     Inkjet-Druck auf Polymerfolien und Glas (Carbon- und Metalltinten)
• 3D-CAD (SolidWorks)